一、血液的采集

常用的采血方法有割（剪）尾采血、眼眶靜脈叢采血、斷頭采血、心臟采血、頸靜脈（動脈）采血、股動脈（靜脈）采血、耳靜脈采血、前肢頭靜脈才學、后肢小靜脈采血等。

二、尿液的采集

實驗動物的尿液常用代謝籠采集，也可通過其他裝置來采集。

（一）用代謝籠采集尿液

代謝籠用于收集實驗動物自然排出的尿液，是一種特別設計的為采集實驗動物各種排泄物的密封式飼養(yǎng)籠，有的代謝籠除可收集尿液外，又可收集糞便和動物呼出的CO2。一般簡單的代謝籠主要用來收集尿液。防在代謝籠內(nèi)飼養(yǎng)的實驗動物，可通過其特殊裝置收集尿液。

（二）導尿法收集尿液

施行導尿術，較適宜于犬、猴等大動物。一般不需要麻醉，導尿時將實驗動物仰臥固定，用甘油潤滑導尿管。對雄性動物，操作員用一只手握住陰J，另一只手將陰J包皮向下，暴露龜T，使尿道口張開，將導尿管緩慢插入，導尿管推進到尿道膜部時有抵抗感，此時注意動作輕柔，繼續(xù)向膀胱推進導尿管，即有尿液流出。雌性動物尿道外口在陰D前庭，導尿時于陰D前庭腹側將導尿管插入陰D外口，其后操作同雄性動物導尿術。

用導尿法導尿可采集到?jīng)]有污染的尿液。如果嚴格執(zhí)行無菌操作，可收集到無菌尿液。

（三）輸尿管插管采集尿液

一般用于要求計量單位時間內(nèi)實驗動物排尿量的實驗。剖腹后，將膀胱牽拉腹腔外，暴露膀胱底兩側的輸尿管。在兩側輸尿管近膀胱處用線分別結扎，于輸尿管結扎處上方剪一小口，向腎臟方向分別插入充滿生理鹽水的插管，用線結扎固定插管，即可見尿液從插管滴出，可以收集。采尿過程中要用38℃熱生理鹽水紗布遮蓋切口及膀胱。

（四）壓迫膀胱采集尿液

實驗人員用手在實驗動物下腹部加壓，手法既輕柔又有力。當增加的壓力使實驗動物膀胱括約肌松弛時，尿液會自動流出，即行收集。

（五）穿刺膀胱采集尿液

實驗動物麻醉固定后，剪去下腹部恥骨聯(lián)合之上，腹正中線兩側的被毛，消毒后用注射針頭接注射器穿刺。取鈍角進針，針頭穿過皮膚后稍微改變角度，以避免穿刺后漏尿，然后刺向膀胱方向，邊緩慢進針邊回抽，直到抽到尿液為止。

（六）剖腹采集尿液

按上述穿刺膀胱采集尿液法做術前準備，其皮膚準備范圍應更大。剖腹暴露膀胱，直視下穿刺膀胱抽取尿液。也可于穿刺前用無齒鑷夾住部分膀胱壁，從鑷子下方的膀胱壁進針抽尿。

（七）提鼠采集尿液（即反射排尿法）

鼠類被人抓住尾巴提起即出現(xiàn)排尿反射，以小鼠的這種反射明顯。可以利用這一反射收集尿液。當鼠類被提起尾巴排尿后，尿滴掛在尿道外口附近的被毛上，不會馬上流走，操作人員應迅速用吸管或玻璃管接住尿滴。

（八）膀胱插管法

腹部手術同輸尿管插管。將膀胱翻出腹外后，用絲線結扎膀胱頸部，阻斷它同尿道的通路。然后在膀胱頂部避開血管剪一小口，插入膀胱漏斗，用絲線做以荷包縫合固定。漏斗好正對著輸尿管的入口處。注意不要緊貼膀胱后壁而堵塞輸尿管。下端接橡皮管插入帶刻度的容器內(nèi)以收集尿液。

三、胸水和腹水的采集

（一）胸水的采集

主要采用胸腔穿刺法收集實驗動物的胸水，也可處死實驗動物剖開胸腔采集胸水。

1、穿刺點定位

于實驗動物腋后線第11～12肋間隙穿刺，穿刺針緊貼肋骨上緣，否則容易損傷肋間神經(jīng)。也可在胸壁近胸骨左側緣第4～5肋間隙穿刺。

2、穿刺方法

收集胸水常采用穿刺法。如果實驗不要求動物繼續(xù)存活，也可用處死動物剖胸取胸水。穿刺部位在動物脊側腋后線胸壁第11～12肋間隙穿刺較安全。此部位是肺下界之外側，既可避免損傷肺組織造成氣胸，又易采集在隔肋竇的胸水。此外，也可在腹側胸壁近胸骨左側緣第4～5肋間隙穿刺。如果有條件在穿刺針頭與注射器之間連一個三通管，但應注意正確運用三通管。

實驗動物取立位或半臥位固定，局部皮膚去毛、消毒、麻醉，穿刺針頭與注射器之間接三通連接裝置，實驗人員以左手拇指、食指繃緊局部皮膚，右手用帶夾的橡皮管套上12～14號針頭，沿肋骨前緣小心地垂直刺入（緊靠肋骨下緣處垂直進針），穿刺肋間肌時產(chǎn)生一定阻力，當阻力消失有落空感時，說明已刺入胸膜腔，用左手固定穿刺針，打開三通連接裝置，緩慢抽取胸水。穿刺結束迅速拔出針頭，輕揉穿刺部位，促進針孔閉合并注意消毒。

操作中嚴防空氣進入胸腔，始終保持胸腔負壓。穿刺應用手控制針頭的深度，以防穿刺過深刺傷肺臟。

（二）腹水的采集

1、抽取狗等大動物腹水，讓狗按自然站立位固定，穿刺部位在恥骨前緣與臍之間，腹中線兩側。剪毛消毒，局部浸潤麻醉。操作者左手姆、食指緊繃穿刺部位的皮膚，右手控制穿刺深度做垂直穿刺。注意不可刺的太深，以免刺傷內(nèi)臟。穿刺針進入腹腔后，腹水多時可見因腹壓高而自動流出。腹水太少可輕輕回抽，并同時稍稍轉動一下針頭，一旦有腹水流出，立即固定好針頭及注射器的位置連續(xù)抽取。

2、抽取大鼠、小鼠的腹水方法簡單，用左手拇指及食指捏住動物頸部皮膚，無名指、小手指及手掌夾住其尾巴固定好動物，使其腹部略朝上，在腹股溝和腹中線之間，消毒皮膚，用8號針頭刺入腹腔，如腹壓高腹水自然流出，如腹水太少，可借助注射器抽取。

抽腹水時注意不可速度太快，腹水多時不要一次大量抽出，以免因腹壓突然下降導致動物出現(xiàn)循環(huán)功能障礙等問題。

四、 分泌液的采集

（一）陰D分泌物的采集

適于觀察陰D角質化上皮細胞。

1、 滴管沖洗法

用消毒滴管吸取少量生理鹽水仔細、反復沖洗被檢雌性動物陰D，將沖洗液吸出滴在載波片上晾干后染色鏡檢。也可直接將沖洗液置于低倍顯微鏡下觀察，根據(jù)細胞類型變化鑒別實驗動物動情周期中的不同時期。

2、棉拭子法

用消毒棉拭子旋轉插入動物陰D內(nèi)，然后在陰D內(nèi)輕輕轉動幾下后取出，即可進行涂片鏡檢。有的動物如大、小鼠等，陰D液較少，取其陰D液時，可用先浸濕后又擠盡無菌生理鹽水的棉拭子取陰D液，這種棉拭子比干棉拭子容易插入陰D。對體型較大的實驗動物，也可先按摩或刺激其陰部，而后再采集其陰D液。

3、刮取法

用光滑的玻璃小勺或牛角制的小刮片慢慢插入陰D內(nèi)，在陰D壁輕輕刮取一點陰D內(nèi)含物，進行涂片鏡檢。

（二）精液（semen）的采集

1、人工陰D套采精液法

本法適用于犬、豬、羊等大動物，采用特制的人工陰D套套在實驗動物陰J上采集精液。采精時，一手捏住陰D套，套住雄性動物的陰J，以*套住雄性動物的陰J為佳，插入陰D套后，若實驗動物發(fā)出低叫聲，表明已經(jīng)射精。此時可取下陰D套，拆下采精瓶，取出精液，迅速做有關檢查。

2、陰D栓采精法

本法是將陰D栓涂片染色，鏡檢凝固的精液。陰D栓是雄性大、小鼠的精液和雌性陰D分泌物混合，在雌鼠陰D內(nèi)凝結而成白色稍透明、圓錐形的栓狀物，一般交配后2～4小時即可在雌鼠陰D口形成，并可在陰D停留12～24小時。

3、其他采精液法

將發(fā)情的雌性動物放在雄性動物一起，當雄性動物被刺激發(fā)情后，立即將雄性動物分開，再用人工法刺激其射精。也可按摩雄性動物的生殖器或用電流等物理方法刺激雄性動物的陰J或其他性敏感區(qū)，使雄性動物被刺激發(fā)情，直射精，用采精瓶采集射出的精液。

（三）乳汁的采集

用按摩擠奶收集乳汁的方法適合犬、豬、羊等大動物乳汁的采集。選用哺乳期的實驗動物，在早上采集乳汁量多，用手指輕輕按摩實驗動物乳頭，使乳汁自然流出，如乳汁不能自然流出，可張開手掌從乳房基底部朝乳頭方向按摩、擠壓整個乳房，即可擠出乳汁。

五、消化液的采集

（一） 唾液

1、直接抽取法

在急性實驗中，可用吸管直接插入動物口腔或唾液腺導管抽吸唾液，此法非常簡單，但從口腔抽吸唾液會有雜質混入。

2、制造腮腺瘺法

在慢性實驗中，收集狗的唾液，要用外科手術方法將腮腺導管開口移向體外，即以腮腺導管為中心，切成一直徑約2～3cm的圓形粘膜片，將此粘膜片，與周圍組織分開，穿過皮膚切口引到頰外，將帶有導管開口的粘膜片與周圍的皮膚縫合，腮腺分泌的唾液就流出頰外。這種方法可以收集到較純凈的唾液。

（二）胃液

1、直接收集胃液法

急性實驗時，先將動物麻醉，將插胃管經(jīng)口插入胃內(nèi)，在灌胃管的出口連一注射器，用此注射器可收集到胃液，此法適用于狗等大型動物。如是大鼠，需手術剖腹，從幽門端向胃內(nèi)插入一塑料管，再由口腔經(jīng)食道將一塑料管插入前胃，用pH7.5、35℃左右的生理鹽水，以12ml/h的流速灌胃，收集流出液，進行分析。

2、制備胃瘺法

在慢性實驗中，收集胃液多用胃瘺法，如全胃瘺法、巴氏小胃瘺法、海氏小胃瘺法等。制備小胃是將動物的胃分離出一小部分，縫合起來形成小胃，主胃與小胃互不相通，主胃進行正常消化，從小胃可收集到純凈的胃液。應用該法，可以待動物恢復健康后，在動物清醒狀態(tài)下反復采集胃液。

（三）胰液和膽汁

在動物實驗中，主要是通過對胰總管和膽總管的插管而獲得胰液或膽汁。狗的胰總管開口于十二指腸降部，在緊靠腸壁處切開胰管，結扎固定并與導管相連，即可見無色的胰液流入導管。大鼠的胰管與膽管匯集于一個總管，在其入腸處插管固定，并在近肝門處結扎和另行插管，可分別收集到胰液和膽汁。有時也可通過制備胰瘺和膽囊瘺來獲得胰液和膽汁。

六、腦脊液的采集

（一）狗、兔腦脊液的采集通常采取脊髓穿刺法

穿刺部位在兩髂連線中點稍下方第七腰椎間隙。動物輕度麻醉后，側臥位固定，使頭部及尾部向腰部盡量彎曲，剪去第七腰椎周圍的被毛。消毒后操作者在動物背部用左手姆、食指固定穿刺部位的皮膚，右手持腰穿刺針垂直刺入，當有落空感及動物的后肢跳動時，表明針已達椎管內(nèi)（蛛網(wǎng)膜下腔），抽去針芯，即見腦脊液流出。如果無腦脊液流出，可能是沒有刺破蛛網(wǎng)膜。輕輕調節(jié)進針方向及角度，如果腦脊液流的太快，插入針芯稍加阻塞，以免導致顱內(nèi)壓突然下降而形成腦疝。

（二）大鼠腦脊液的采集可采用枕大孔直接穿刺法

在大鼠麻醉后，頭部固定于定向儀上。頭頸部剪毛、消毒，用手術刀沿縱軸切一縱行切口（約2cm）用剪刀鈍性分離頸部背側肌肉。為避免出血，深層附著在骨上的肌肉用手術刀背刮開，暴露出枕骨大孔。由枕骨大孔進針直接抽取腦脊液。抽取完畢逢好外層肌肉、皮膚。刀口處可撒些磺胺藥粉，防止感染。采完腦脊液后，應注入等量的消毒生理鹽水，以保持原來腦脊髓腔的壓力。

七、骨髓的采集

1、大鼠、小鼠骨髓的采集

用頸椎脫臼法處死動物，剝離出胸骨或股骨，用注射器吸取少量的Hank平衡鹽溶液，沖洗出胸骨或股骨中全部骨髓液。如果是取少量的骨髓作檢查，可將胸骨或股骨剪斷，將其斷面的骨髓擠在有稀釋液的玻片上，混勻后涂片涼干即可染色檢查。

2、大動物骨髓的采集

狗等大動物骨髓的采集可采取活體穿刺方法。先將動物麻醉、固定、局部除毛、消毒皮膚，然后估計好皮膚到骨髓的距離，把骨髓穿刺針的長度固定好。操作人員用左手把穿刺點周圍的皮膚繃緊，右手將穿刺針在穿刺點垂直刺入，穿入固定后，輕輕左右旋轉將穿刺針鉆入，當穿刺針進入骨髓腔時常有落空感。狗骨髓的采集，一般采用髂骨穿刺。狗等大動物常用的骨髓穿刺點：胸骨：穿刺部位是胸骨體與胸骨柄連接處。肋骨：穿刺部位是第5～7肋骨各點的中點。脛骨：穿刺部位是股骨內(nèi)側、靠下端的凹面處。如果穿刺采用的是肋骨，穿刺結束后要用膠布封貼穿刺孔，防止發(fā)生氣胸。